ANEXO H

Métodos analíticos de referencia

Métodos analíticos de referencia

• A. PARAMETROS ORGANOLEPTICOS
  • 1. Color: Método fotométrico calibrado con arreglo a la escala Pt/Co.
  • 2. Turbidez: Método del sílice. Método de formacina. Método de Secchi.
  • 3. Olor: Por disolución sucesiva, mediciones hechas a 12 oC o a 25 oC.
  • 4. Sabor: Por disoluciones sucesivas, mediciones hechas a 12 ºC o a 25 ºC.
• B. PARAMETROS FISICO-QUIMICOS
  • 5. Temperatura: Termometría.
  • 6. Concentración en ión hidrógeno: Electrometría.
  • 7. Conductividad: Electrometría.
  • 8. Cloruros: Titrimetría. Método de Mohr.
  • 9. Sulfatos: Gravimetría. Complexometría. Espectrofotometría.
  • 10. Sílice: Espectrofotometría de absorción.
  • 11. Calcio: Absorción atómica. Complexometría.
  • 12. Magnesio: Absorción atómica.
  • 13. Sodio: Absorción atómica.
  • 14. Potasio: Absorción atómica.
  • 15. Aluminio: Absorción atómica. Espectrofotometría de absorción.
  • 16. Dureza total: Complexometría.
  • 17. Residuo seco: Desecado a 180 oC y pesada.
  • 18. Oxígeno disuelto: Método de Winkler. Método con electrodos específicos.
  • 19. Anhídrido carbónico libre: Acidimetría.
• C. PARAMETROS RELATIVOS A LAS SUBSTANCIAS NO DESECHABLES
  • 20. Nitratos: Espectrofotometría de absorción. Método con electrodos específicos.
  • 21. Nitritos: Espectrofotometría de absorción.
  • 22. Amonio: Espectrofotometría de absorción.
  • 23. Nitrógeno Kjeldahl: Oxidación. Titrimetría/espectrofotometría de absorción.
  • 24. Oxidabilidad: KMnO4 hasta ebullición durante 10 minutos en medio ácido.
  • 25. Carbono orgánico total (TOC): No tiene.
  • 26. Hidrógeno sulfurado: Espectrofotometría de absorción.
  • 27. Substancias extraíbles con cloroformo: Extracción líquido/líquido por medio de cloroformo purificado con pH neutro pesada del residuo.
  • 28. Hidrocarburos (disueltos o emulsionados); Aceites minerales: Espectrofotometría de absorción infrarroja.
  • 29. Fenoles (índice de fenoles): Espectrofotometría de absorción, método a la paranitranilina y método con amino-4-antipirina.
  • 30. Boro: Absorción atómica. Espectrofotometría de absorción.
  • 31. Agentes tensoactivos (que reaccionan con el azul de metileno): Espectrofotometría de absorción, con azul de metileno.
  • 32. Otros compuestos organoclorados: Cromatografía en fase gaseosa o líquida después de extracción por medio de disolventes adecuados y purifiación. Identificación, si fuera necesaria, de los componentes de las mezclas. Determinación cuantitativa.
  • 33. Hierro: Absorción atómica. Espectrofotometría de absorción.
  • 34. Manganeso: Absorción atómica. Espectrofotometría de absorción.
  • 35. Cobre: Absorción atómica. Espectrofotometría de absorción.
  • 36. Zinc: Absorción atómica. Espectrofotometría de absorción.
  • 37. Fósforo: Espectrofotometría de absorción.
  • 38. Flúor: Espectrofotometría de absorción. Método con electrodos específicos.
  • 39. Cobalto: No tiene.
  • 40. Materias en suspensión: Método por filtración sobre membrana porosa 0,45 o centrifugación (tiempo mínimo 15 minutos y aceleración media entre 2.800 y 3.200 g), secado a 105 ºC y pesada.
  • 41. Cloro residual: Titrimetría. Espectrofotometría de absorción.
  • 42. Bario: Absorción atómica.
• D. PARAMETROS RELATIVOS A LAS SUBSTANCIAS TOXICAS
  • 43. Plata: Absorción atómica.
  • 44. Arsénico: Espectrofotometría de absorción. Absorción atómica.
  • 45. Berilio: No tiene.
  • 46. Cadmio: Absorción atómica.
  • 47. Cianuros: Espectrofotometría de absorción.
  • 48. Cromo: Absorción atómica. Espectrofotometría de absorción.
  • 49. Mercurio: Absorción atómica.
  • 50. Níquel: Absorción atómica.
  • 51. Plomo: Absorción atómica.
  • 52. Antimonio: Espectrofotometría de absorción.
  • 53. Selenio: Absorción atómica.
  • 54. Vanadio: No tiene.
  • 55. Plaguicidas y productos similares: Ver método contemplado en el punto 32.
  • 56. Hidrocarburos policíclicos aromáticos: Medición de la intensidad de fluorescencia por ultravioleta después de extracción con hexano. Cromatografía en fase gaseosa o medición de la fluorescencia por ultravioleta después de cromatografía en capas finas. Mediciones comparativas con relación a una mezcla de seis substancias patrón con la misma concentración. (7)
• E. PARAMETROS MICROBIOLOGICOS
  • 57. Coliformes totales (8) : Fermentación en tubos múltiples. Traslado de los tubos positivos en medio de confirmación. Recuento según la cantidad más probable (NMP) o filtrado sobre membrana y cultivo en medio apropiado como gelosa lactosada con tergitol, gelosa de endo, caldo de teepol al 0,4 por 100, traslado e identificación de las colonias sospechosas. Para los coliformes totales, temperaturas de incubación 37 ºC. Para los coliformes fecales, temperaturas de incubación 44 ºC.
  • 58. Coliformes fecales: Fermentación en tubos múltiples. Traslado de los tubos positivos en medio de confirmación. Recuento según la cantidad más probable (NMP) o filtrado sobre membrana y cultivo en medio apropiado como gelosa lactosa con tergitol, gelosa de endo, caldo de teepol al 0,4 por 100, traslado e identificación de las colonias sospechosas. Para los coliformes totales, temperatura de incubación 37 ºC. Para los coliformes fecales, temperaturas de incubación 44 ºC.
  • 59. Estreptococos fecales (8) : Método con ácido de sodio (Litsky). Recuento según el número más probable.
  • 60. Clostridium sulfitorreductores (8) : Después de calentamiento de la muestra a 80 ºC, recuento de las esporas por:
    • - siembra en medio con glucosa, sulfito de hierro y recuento de las colonias con halo negro.
    • - filtrado sobre membrana, depósito del filtro invertido sobre un medio con glucosa, sulfito y hierro, recubierto de gelosa, recuento de colonias negras.
    • - distribución en tubos de medio «DFRCM» (Differential Reinforced Clostridia Medium), traslado de los tubos negros en un medio con leche tornasolada, recuento según el número más probable.
  • 61/62. Recuento de los gérmenes totales (8) : Inoculación por incorporación en gelosa nutritiva.

  Tests complementarios

  • Salmonellas: Concentración por filtrado sobre membrana. Inoculación en medio de enriquecimiento previo. Enriquecimiento, traslado en gelosa de aislamiento. Identificación.
  • Estafilococos patógenos: Filtrado sobre membrana y cultivo en medio específico (por ejemplo, medio hipersalado de Chapman). Visualización de los caracteres patógenos.
  • Bacteriófagos fecales: Técnica de Guelin.
  • Enterovirus: Concentración por filtrado, por floculación o por centrifugación e identificación.
  • Protozoos: Concentración por filtrado sobre membrana, examen microscópico, test patogénico.
  • Animálculos (gusanos-larvas): Concentración por filtrado sobre membrana. Examen microscópico. Test patogénico.
• F. CONCENTRACIóN MíNIMA EXIGIDA

  Alcalinidad: Acidimetría con anaranjado de metilo.

Derogado por

RD 140/2003 de 7 Feb. (criterios sanitarios de la calidad del agua de consumo humano)

Norma afectada por

BOE 24 Noviembre. Corrección de errores RD 1138/1990, de 14 Sep. (se aprueba la Reglamentación Técnico-Sanitaria para el abastecimiento y control de calidad de las aguas potables de consumo público)